Metody i techniki w biotechnologii molekularnej Kierunek studiów: Inżynieria biomedyczna
Kod programu: 08-S1IB12.2016

Nazwa modułu: Metody i techniki w biotechnologii molekularnej
Kod modułu: 08-IBIMB-S1-MiTwBM
Kod programu: 08-S1IB12.2016
Semestr: semestr zimowy 2018/2019
Język wykładowy: polski
Forma zaliczenia: zaliczenie
Punkty ECTS: 3
Opis:
Przebieg zajęć laboratoryjnych obejmuje następujące doświadczenia i procedury: 1. Izolacja DNA metodą micro C-TAB 2. Metody określania stężenia i czystości wyizolowanych kwasów nukleinowych – NanoDrop 3. PCR- jako metoda specyficznej amplifikacji kwasów nukleinowych 4. Systemy elektroforezy kwasów nukleinowych – elektroforeza produktów amplifikacji PCR 5. Izolacja RNA z różnych organów siewek jęczmienia i określanie stężenia i czystości izolatów; Reakcja odwrotnej transkrypcji 6. Rekcja RT-PCR dla genu ulegającego zróżnicowanej przestrzennie ekspresji, elektroforeza produktów amplifikacji
Wymagania wstępne:
Zapoznanie z podstawowymi zagadnieniami dotyczącymi biologii komórki oraz biologii molekularnej
Literatura podstawowa:
(brak informacji)
Efekt modułowy Kody efektów kierunkowych do których odnosi się efekt modułowy [stopień realizacji: skala 1-5]
Definicja Biologii molekularnej jako interdyscyplinarnej dziedziny nauki. Zasady funkcjonowania organizmów żywych. Postawy metabolizmu na poziomie komórkowym. Przepływ informacji genetycznej. Budowa komórki pro- i eukariotycznej. Struktura i metabolizm komórek roślinnych i zwierzęcych – charakterystyka i funkcja organelli komórkowych. DNA jako nośnik informacji genetycznej – budowa DNA oraz struktura chromatyny. Replikacja DNA. Mitoza i mejoza – chromosomowe i molekularne podstawy dziedziczenia. Struktura genomów pro- i eukariotycznych. Struktura genu oraz sekwencji regulatorowych. Przebieg procesu transkrypcji i rodzaje RNA. Kod genetyczny, struktura rybosomów i proces translacji. [k_1]
 W05 [5/5]
Izolacja DNA roślinnego metodą mikro C-TAB, określenie stężenia i czystości wyizolowanego DNA z zastosowanie spektrofotometru Nano Drop ND-1000. Zastosowanie enzymów restrykcyjnych jako narzędzi biologii molekularnej – traktowanie enzymami restrykcyjnymi DNA faga lambda oraz wyizolowanego DNA genomowego jęczmienia (Hordeum vulgare), zapoznanie z metodami elektroforezy kwasów nukleinowych w żelach agarozowych i akrylamidowych, opis i porównanie uzyskanych wyników cięcia restrykcyjnego. Zastosowanie techniki PCR (Polymerase Chain Reaction) jako metody selektywnego namnażania określonych fragmentów genomu, analiza uzyskanych wyników po elektroforezie agarozowej. Izolacja RNA z liści i korzeni siedmiodniowych siewek jęczmienia z zastosowaniem odczynnika TriPure, określenie koncentracji i czystości wyizolowanego RNA z zastosowanie spektrofotometru Nano Drop ND-1000. Przeprowadzenie reakcji odwrotnej transkrypcji z zastosowaniem zestawu RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit (Fermentas) na bazie wyizolowanych RNA. Przeprowadzenie reakcji RT-PCR z zastosowaniem starterów dla genu HvEXPB1, ulegającego zróżnicowanej ekspresji wyłącznie w korzeniach jęczmienia – analiza wyników reakcji po elektroforezie agarozowej. [k_2]
 U01 [4/5]
przestrzega zasad etyki zawodowej [k_3]
 K04 [5/5]
przestrzega zasad bezpieczeństwa pracy [k_4]
 K07 [2/5]
Typ Opis Kody efektów modułowych do których odnosi się sposób weryfikacji
kolokwia [k_w_1]
sprawdzające wiedzę i umiejętności dotyczące treści prezentowanych na poszczególnych zajęciach
 k_1 k_2 k_3 k_4
Rodzaj prowadzonych zajęć Praca własna studenta Sposoby weryfikacji
Typ Opis (z uwzględnieniem metod dydaktycznych) Liczba godzin Opis Liczba godzin
wykład [k_fs_1]
Omówienie zagadnień związanych z tematyką zajęć
 15
Praca z literaturą
 15 kolokwia [k_w_1]
laboratorium [k_fs_2]
Student otrzymuje instrukcje do wykonania projektu
 30
Wykonywanie projektu
 30 kolokwia [k_w_1]
Załączniki
Opis modułu (PDF)
Informacje o sylabusach mogą ulec zmianie w trakcie trwania studiów.
Sylabusy (USOSweb)
Semestr Moduł Język wykładowy
(brak danych)